实验一  药理实验基础知识

一、 目的

1.  掌握基本操作，锻炼动手、动脑能力；

2.  更好地掌握药理学基本理论知识；

3.  培养科学思维

二、 基本要求

1.  实验前：预习实验内容并复习相关理论知识；

2.  实验时

⑴ 实验器材要妥善保管；

⑵ 实验操作按步骤进行，仔细观察实验中出现的现象，实事求是地做好记录；

⑶ 注意节约实验药品；

⑷ 维持良好的课堂纪律。

3.  实验后

⑴ 各组同学将实验动物处死，实验台擦干净，将实验方盘送回准备室；

⑵ 值日生搞好实验室卫生，将死亡动物送至指定场所；

⑶ 书写实验报告。

三、 实验报告的书写

1.  题目

2.  目的

3.  原理

4.  材料：实验动物，器材，药品

5.  方法：用自己的语言简单扼要描述出来；

6.  结果：要求真实、清楚；

7.  讨论：将实验结果进行比较、分析；实验中有哪些不足之处；结果异常或失败的原因；

8.  结论：将实验结果进行归纳总结，应带有提示性质。

四、 实验设计基本原则

1.  随机原则

使每一实验对象都有同等的机会抽到实验组或对照组中，除处理因素外其他因素尽可能均衡一致，从而抵消非实验因素的影响。

2.  对照原则

⑴ 组间对照：阴性对照，阳性对照，同因素不同水平对照；

⑵ 自身前后对照

3.  重复原则

五、 实验动物

1.  动物的选择

 ⑴ 小白鼠：适用于需大量动物的实验，如某些药物的筛选，半数致死量的测定。也较适用于避孕药实验、抗炎镇痛药实验、中枢神经系统药实验、抗肿瘤药及抗衰老药实验等。

 ⑵ 大白鼠：比较适用于抗炎药物实验，血压测定、利胆、利尿药实验，也可用于进行亚急性和慢性毒性实验。

 ⑶ 豚鼠：因其对组胺敏感，并易于致敏，故常被选用于抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。也常用于离体心脏、心房、肠管实验。又因它对结核敏感，常用于抗结核病药的实验。

⑷ 家兔：常用于观察研究脑电生理作用，药物对小肠的作用。由于家兔体温变化敏感，也常用于体温实验，用于热原检查。

⑸ 狗：狗是记录血压，呼吸最常用的大动物。还可利用狗做成胃瘘、肠瘘，以观察药物对胃肠蠕动和分泌的影响。在进行慢性毒性实验时，也常采用狗。

2. 实验动物的编号

狗、兔等较大的动物可用特制的铝质号码牌固定在颈部或耳上。大鼠、小鼠如为白色可用黄色苦味酸在不同的体表标志上标记。

3. 麻醉药的选择

⑴ 局部麻醉：常采用2％普鲁卡因做皮下浸润注射，可用于局部手术。

⑵ 全身麻醉：

① 吸入麻醉：可将乙醚蘸在棉球上放入玻璃罩内，利用乙醚挥发的性质，经肺泡吸收，作用较快，适用于小鼠、大鼠短时间麻醉。

② 注射麻醉：常用戌巴比妥钠和乌拉坦。

4. 动物捉拿及固定方法

⑴ 小白鼠

右手抓住其尾部放在鼠笼盖铁纱网上，用左手拇指及食指沿其背部向前抓起颈背部皮肤，并以左手的小指、无名指固定其尾部，便可将小鼠固定在手上。

⑵ 大白鼠

用右手提起尾部，放在粗糙面上，左手的拇指和食指捉其头部，其余三指夹住背腹部即可固定。

⑶ 豚鼠

豚鼠性情温和不咬人，用手握住躯干即可。、

⑷ 家兔

可用一手抓住家兔颈背部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，使兔呈坐位姿势。在进行仰位手术操作时，可用绳带将其四肢仰位捆绑在兔手术台上。头部用兔头固定夹固定。

5. 动物的给药方法

    ⑴ 小白鼠

① 灌胃法(i.g.)：以左手固定小鼠后，使其腹部朝上，颈部伸直。右手持配有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面沿上腭进入食道。小鼠灌胃容量一般为0.1～0.3m1／10g。

② 腹腔注射(i.p.)：以左手固定小鼠，方法同灌胃，右手持注射器，取30度角将针头从下腹部向头端刺入腹腔。进针部位不宜过高，刺入不宜太深，以免伤及内脏。小鼠腹腔注射量一般为0.1～0.3ml／l0g。

③ 皮下注射(s.c.)：用左手固定小鼠后，右手持注射器于拇指和食指捏起的皮肤处进针即可。

④ 静脉注射(i.v.)：将小鼠置于特制的固定筒内或倒置的大漏斗下，让其尾部露出。用酒精或二甲苯涂擦尾部，或将鼠尾在50'C热水中浸泡半分钟使血管扩张。左手拉尾端，右手持注射器将针头刺入尾静脉，推入药液。

⑵ 家兔

① 灌胃：需两人合作进行。一人取坐位用两腿夹持兔身，左手握家兔双耳，右手抓住两前肢。另一人将木制开口器横插家兔口内，压住舌头并固定之。取8号导尿管从开口器中部小孔插入食道。插管时如误入气管会出现动物的挣扎和呼吸困难。也可将导尿管的外端浸入水中，如有气泡吹出，表示插在气管内，此时应拔管重插。当判明导尿管在食道以内后，用注射器接通导尿管将药液推入。

② 皮下、腹腔注射：给药方法基本上同小鼠，唯针头可稍大，给药量可稍多。皮下与肌内为0.5～1.0/mg，腹腔为1.0～5.0ml/mg。

③ 静脉注射：将家兔置固定箱内，拨去耳壳外缘的毛，选择一条比较明显的耳缘静脉，用酒精棉球涂擦皮肤，使血管显露。用左手拇指和中指捏住兔的耳尖部，食指垫在兔耳注射处的下面，右手持注射器，将针头从近耳尖处刺入，当确认针头在血管中后，将药液推入。

1.  动物的处死：大、小鼠通常用颈椎脱臼法处死。

实验二  硝酸士的宁LD₅₀的测定

【目的和原理】掌握药物半数致死量（LD₅₀）的测定方法；掌握简化机率单位法的计算方法。了解急性毒性实验的相关内容及新药安全性评价的内容。

药物的急性毒性常以LD₅₀来表示，即能够引起试验动物—半死亡的剂量。在实验设计合理并严格掌握实验技术的条件下，药物致死量的对数大多在半数致死量的上下形成常态分布。通过计算可求出LD₅₀。

【实验对象】小白鼠(体重18～22 g雌雄各半)

【实验药品】0.008 %硝酸士的宁溶液、苦味酸溶液

【实验器材】注射器、鼠笼、天平

【实验步骤】

简化机率单位法

1、探索剂量范围：取小白鼠12～15只，以3只为一组，分为4-5组，选择一系列剂量，分别按组腹腔注射士的宁溶液，观察出现的症状并记录死亡数，找出引起10 %和90 %死亡率剂量的所在范围。

2、正式实验

在预备实验所获得的10 %和90 %致死量的范围内，选用几个等比级剂量，0.10 mL /10g、0.12 mL /10g、0.14 mL /10g，0.17 mL /10g、0.20 mL /10g、0.24 mL /10g (剂量间的比例一般用1：0.7～1：0.85)，使一半组数死亡率在10 %～50 %，另一半组数死亡率在50 %～90 %之间，各组的动物数应相等，一般每组可用10～20只，动物的体重和性别要均匀分配。完成动物分组和剂量计算后按组腹腔注射给药。

3、给药后观察并记录中毒症状，30分钟后清点各组动物的死亡数，计算硝酸士的宁的LD₅₀、LD₅₀的可信限和可信限率。

【结果】

用两个剂量时

=log^-1[]

S_LDK =·

用三个剂量时

=log^-1[]

S_LDK =·

用四个剂量时

=log^-1[+]

S_LDK =·

用五个剂量时

=log^-1[]

S_LDK =·

LD_K的可信限=LD_K±1.96S_LDK   (P =0.95)

            =LD_K±2.58 S_LDK   (P =0.99)

LD_K的可信限率=       (P =0.95)

           =        (P =0.99)  

X₁、X₂：剂量的对数，从小剂量到大剂量

P₁、P₂：各剂量组的动物死亡率

Y₁、Y₂：各剂量组的动物死亡率转换成机率单位

Wc：权重系数

W：权重     W = n Wc（各组动物数×权重系数）

n：各组动物数  N：组数

I：剂量间比值的对数

例：某批胆碱酯酶复活剂DMO4-Cl₂腹腔注射给予小白鼠后，观察三天内的死亡率，试计算其半数致死量和可信限。

I=log=2.0969-2.0000=0.0969

=log^-1[]

= log^-1

= log^-1(2.0969-0.0061) = log^-12.0908 =123.2 mg / kg

S_LD50 =·

     =·

     =· =8.379×0.7096 = 5.946

LD₅₀的可信限=123.2±1.96×5.946 =123.2±11.6 mg / kg  (P =0.95)

LD_K的可信限率 = =0.094 =9.4%    

【注意事项】给药剂量要准确；实验室尽量保持安静；注意观察给药后的各种反应。

实验三、戊巴比妥钠的抗惊厥作用

【目的和原理】学习制做动物惊厥模型及抗惊厥药的实验方法；观察戊巴比妥钠对士的宁惊厥的保护作用；学习X²检验；了解其它惊厥模型的制备。

硝酸士的宁是脊髓抑制性神经元甘氨酸受体的拮抗剂，对脊髓有选择性兴奋作用。皮下注射可致小鼠全身强直性惊厥。戊巴比妥钠促进中枢GABA对GABA_A受体的结合，产生超极化抑制性突触效应，从而具有抗惊厥作用。

【实验对象】小白鼠，雌雄均可，体重18～22g

【实验药品】0.5 %戊巴比妥钠溶液、0.008 %硝酸士的宁溶液、生理盐水

【实验器材】天平、鼠笼，注射器

【实验方法】

1、  取小鼠8只，称重，标记，按体重随机分为两组。实验组腹腔注射戊巴比妥钠50 mg/kg (0.5 %溶液0.1 mL/10g)，对照组腹腔注射等容量生理盐水。

2、  20分钟后依次给每只鼠皮下注射0.008 %硝酸士的宁0.2 mL/10g。观察30分钟，记录动物死亡数。

【结果】

全班实验结果汇总，进行差值的显著性检验—X²检验，四格表资料x²检验公式：

X² =

n：动物总例数四格表

自由度n’=（行数-1）·（列数-1）

查X²表

【注意事项】

给药后应保持室内安静，避免刺激实验动物。

实验四、吗啡的镇痛作用

1．热板法

【目的和原理】观察吗啡的镇痛作用；掌握用热板法测试镇痛药物的方法。

将小鼠置于一定温度的热板上，热刺激小鼠足部产生痛反应，即舔后足反应。以小鼠出现舔后足的时间作为痛反应指标（痛阈值），判断药物是否具有镇痛作用。

【实验对象】小白鼠，雌性，体重18～22g，

【实验药品】0.1％盐酸吗啡、生理盐水

【实验器材】恒温水浴、鼠笼、天平、注射器、热板

【实验方法】

1．取小白鼠10只，编号、称量体重。

2．将恒温水浴调节至55±0.5℃。将小鼠放于热板上，记录自放入热板至出现舔后足所需时间（秒）作为该鼠的痛阈值。凡痛阈值在10～30秒之间为合格。取筛选合格的小鼠6只，随机分成两组，测定各小鼠的正常痛反应（舔后足）时间，各测2次，每次间隔5分钟，求平均值作为该鼠给药前痛阈值。

3．给药组小鼠腹腔注射盐酸吗啡0.15 mg／l0 g（0.1％溶液0.15 ml／l0 g）。对照组小鼠腹腔注射生理盐水0.15 ml／10 g。给药后15、30、45、60及90分钟分别测定痛反应时间。如小白鼠在热板上60秒，仍无痛反应，应立即取出，按60秒计。

【结果】

填表计算出用药后不同时间的痛阈提高百分率。以痛阈提高百分率作纵坐标，给药后时间作横坐标，绘出各药的镇痛作用时程曲线，加以分析讨论。

【注意事项】

 1．热板法个体差异大，应筛选实验动物，过敏、迟钝或跳跃者则剔除不用。

 2．小白鼠以雌性为好，雄性小白鼠遇热时阴囊松弛，与热板接触而反应过敏（易致跳跃），常影响实验结果。

 3．室温在13～18 ℃，动物对痛反应时间波动较小，实验时将温度控制在此范围内。

实验五、氢化可的松的抗炎作用及机制探讨

【目的和原理】炎症的基本病理改变是变性、渗出和增生。大鼠足跖皮下注射致炎剂角叉菜胶，可引起大鼠足跖炎性肿胀。通过测量踝关节处周长，可知肿胀程度，并可观察药物的抗炎作用。PGE是炎症介质，并在免疫调节中也起重要作用。通过定量测定PGE₂含量，可知药物抑制PGE₂产生可能是其抗炎机制之一。

【实验对象】 雄性大鼠（120～180 g）

【实验药品】① 甲醇

② 0.5 mol/L KOH-甲醇溶液

            ③ 0.5% 氢化可的松注射液

            ④ N.S.

            ⑤ 1％ 角叉菜胶

【实验器材】天平、鼠盒、台式恒温水浴、721紫外可见分光光度计、台式离心机、注射器（0.5 ml、2 ml）、刻度离心试管(20 ml)、手套、软尺、手术剪

【实验方法】

取大鼠16只，称重，编号，随机分为给药组及生理盐水组，每组8只。给药组腹腔注射氢化可的松0.6 ml/100g，对照组腹腔注射等容量生理盐水，各组均在给药前测量右后足踝关节处周长。给药15分钟后于右后足皮下向关节方向注射1％角叉菜胶0.1 ml/只，分别于注射后15′，30′，45′，60′，90′，120′测量每组大鼠右后关节处周长，计算肿胀度。

处死大鼠，在踝关节上0.5 cm处剪下右后足，称重后放入刻度试管中，用生理盐水5 ml浸泡1小时。取出足爪，3000 rpm/min离心浸泡液3分钟。吸取上清液0.1 ml,加入0.5 mol/L KOH-甲醇溶液2 ml后,将试管置于50℃恒温水浴中异构化20分钟。然后用甲醇稀释至20 ml，在278 nm处测其光密度（OD）值。PGE₂含量以每克炎性组织相当的吸收光密度值表示。

【实验结果】

肿胀度=  注射角叉菜胶后周长－注射角叉菜胶前周长                    

1.计算出给药组与对照组右后足不同时间点的肿胀度，并将数据填入下表。然后以肿胀度为纵坐标，时间为横坐标，绘出给药组与对照组作用时间曲线。

2.计算出给药组与对照组右后足PGE₂含量，并将数据填入下表。对结果进行组间对照t检验。

【注意事项】

1．用软尺量关节周长,应由专人来操作。

2.测量足跖或踝关节周长时,每次须在同一位置

3.剪下的肿胀足爪需剥皮、剪碎后再浸泡

实验六、药物对离体豚鼠心脏冠脉流量的影响

【目的和原理】学习离体心脏冠脉灌流的实验方法；观察几种药物对豚鼠冠脉流量的影响；学习自身对照的T检验方法。

离体心脏通过主动脉插管，将恒温恒压的灌流液由冠状动脉灌流整个心肌，然后灌流液经冠状静脉窦从右心房流出，收集灌流液的多少，可以反映冠脉流量。

【实验对象】豚鼠，雌雄均可，体重250～350g

【实验药品】 任洛氏营养液、10ug/ml硫酸异丙肾上腺素(ISO)、复方丹参注射液、0.1U/ml脑垂体后叶素(Pit)

【实验器材】灌流瓶，恒压管，超级恒温水浴，心脏保温套管，主动脉插管，温度计，供氧装置，手术器械，培养皿，量筒，注射器

【实验方法】

1.调节仪器

①水浴温度37±0.5℃

②恒压管的液面高度，使液面高出主动脉根部40～60cm

③管道内全部充满任氏液，主动脉插管排气泡

④通O₂：2～3个气泡/秒

2.离体心脏制备：将豚鼠击昏（勿过重致死），于剑突处剪口，剪开胸腔，暴露心脏，轻轻提起心脏，用弯剪刀剪断血管及连接组织，尽量上剪，使主动脉多保留一些，备插管时用。将心脏置于冷任洛氏液中，轻轻挤压心脏，排出余血。

3.固定标本：用两小镊子提起主动脉残端，将其套在插管上并结扎固定，置保温套管内，打开弹簧夹，使任洛氏液经主动脉达冠状动脉流入心脏而入右心房，从腔静脉及肺动脉的断端流出。

4.冠脉流量的测定：

①稳定标本5～10min，测量连续3min的每分钟流量。若3次数值近似，差值小于0.5ml，即已稳定，以均值为给药前正常值，（一般5～10ml/min为宜）。

②给药：从插管的侧支依次注入被试药，测定给药后的每分钟流量。找到极值（最大或最小）后，按①操作，待标本稳定后做下一药。给药顺序为：复方丹参液0.3ml，ISO 0.2ml，Pit 0.2ml。

【结果】

1.汇集全班数据按下表列出实验结果

2.做自身对照t检验

d：给药前后的差值均数；Sd：差值标准误；n：实验例数

3.计算冠脉流量增加百分率

冠脉流量增加百分率大于30%，可以认为该药有明显的扩冠作用。

【注意事项】

1.制备离体心脏时不要伤及窦房结，操作要迅速。

2.动脉插管不宜过深，以免堵住冠脉开口。

实验七、可待因的镇咳作用

1 小鼠氨水引咳

【目的和原理】学习用氨水引咳的方法；观察可待因的镇咳作用。

小鼠吸入氨水后，刺激呼吸道粘膜感受器，反射性地引起咳嗽。

【实验对象】小鼠，雌雄均可，体重18～22g。

【实验药品】0.3％磷酸可待因、生理盐水、浓氨水

【实验器材】鼠笼、天平、棉花、大烧杯

【实验方法】每实验小组4只小鼠，称重、标记，随机分为两组，每组2只。实验组灌胃0.3％磷酸可待因0.2 ml／l0g，对照组灌胃等容积的生理盐水。给药后30 min将动物放入倒置的大烧杯中（烧杯中放置一棉球，用注射器取0.2 ml浓氨水注入棉球中），立即记录小鼠的咳嗽潜伏期和2 min内的咳嗽次数。

【实验结果】汇总结果，作咳嗽潜伏期和咳嗽次数的t-test。

【注意事项】1.每只小鼠放入烧杯中时都要换新棉球，而且浓氨水的量要准确。

2.观察并记录小鼠咳嗽时,最好要两个人在不同的角度同时进行观察,并且视线要与小鼠的嘴在同一水平,以免漏记。

2 豚鼠枸橼酸引咳

【目的和原理】学习用枸橼酸引咳的方法；观察可待因的镇咳作用。

枸橼酸是一种较强的化学刺激物，豚鼠吸入枸橼酸后，作用于呼吸道粘膜感受器，反射性地引起咳嗽。如果药物能抑制呼吸道粘膜感受器或能抑制咳嗽中枢，可使其发生咳嗽的潜伏期延长或使其咳嗽次数减少。

【实验对象】豚鼠，雌雄均可，体重200～250g

【实验药品】0.3％磷酸可待因、17.5％枸橼酸、生理盐水

【实验器材】超声波雾化器、玻璃钟罩、秒表。

【实验方法】

1. 选取5min内咳嗽次数不少于10次的豚鼠，随机分为生理盐水对照组和可待因组，每组动物8只。

2. 给药：实验组i.g. 可待因0.2 ml／l0g，对照组i.g. 生理盐水0.2 ml／l0g；

3. 给药后30 min将豚鼠置于3 L容积的玻璃罩内，接受17.5％枸橼酸溶液恒压喷雾10 s，观察和记录各组豚鼠的咳嗽潜伏期和2 min内的咳嗽次数。

【实验结果】

结果汇总，做咳嗽潜伏期和咳嗽次数的t-test。

【注意事项】

1．  须在实验前一日对豚鼠进行预选，5 min内咳嗽少于10次者不用。

2．  豚鼠接受枸橼酸喷雾时间的长短可以是10 s、20 s、30 s，也可以是60 s;记录咳嗽次数的时间可以是2 min、3 min，也可以是5 min。

3．枸橼酸喷雾量对实验结果影响很大，每只鼠的喷雾量要一致，每作完一只鼠，应注意将玻璃钟罩内的枸橼酸吹赶净。实验时，最好将药物组与对照组交叉进行。

实验八、大鼠肝脏过氧化物测定

【目的和原理】

学习测定过氧化脂质的方法，观察药物的抗氧化作用

自由基的过氧化作用与许多疾病的发生、发展及衰老密切相关。自由基可使脂类形成脂质过氧化物（过氧化脂质）。过氧化脂质进一步分解为丙二醛，后者与硫代巴比妥酸反应生成粉红色化合物，可用分光光度计进行定量测定。四乙氧基丙烷在上述反应的同一条件下也可产生丙二醛。因此用四乙氧基丙烷作为标准品。

【实验对象】大白鼠，雌雄均可，体重250～300g

【实验药品】20％三氯醋酸、0.67％硫代巴比妥酸

【实验器材】恒温水浴振荡器、离心机、旋涡振荡器、高速组织匀浆机、722分光光度计、恒温水浴、定量移液器（1 ml、0.5 ml、0.1 ml）、离心管（10 ml）、试管架、小烧杯、记号笔、量筒（250 ml）、手术剪刀（直）、眼科镊子、滤纸、天平

【实验方法】

1.将大白鼠断头处死后，迅速取出肝脏，用滤纸吸去残血，称取10 g，剪成小碎块，加少量生理盐水，用匀浆机制肝匀桨（8000～10000 r／mim）后，加生理盐水至200 ml（即5％肝匀浆）。

2.将离心试管编号，取大鼠肝匀浆1.5 ml分别加入离心试管内。实验管分别加入不同浓度的维生素C 0.1 ml，对照管加入0.1 ml生理盐水。另设空白管（此管在光电比色计调零时用），加入1.5 ml 20％三氯醋酸及0.1 m1生理盐水。

3.上述各管放于恒温水浴振荡器中，在37℃条件下振荡温育1.5 h。

4.取出后加入1.5 ml 20％三氯醋酸（除空白管外）。混匀后静置10 min，离心3000 rpm、10 min。

5.取上清液1.5 ml，加l ml 0.67％硫代巴比妥酸，沸水浴加热10 min。冷却后在722分光光度计532 nm波长处比色测定。

【实验结果】

在四乙氧基丙烷标准曲线上查出相应的丙二醛值，然后乘以系数68.89，即得丙二醛nmol／g（湿组织）。

【注意事项】

1．每次取匀浆时，应先振摇烧杯后再取，使各试管匀浆浓度保持一致。

2．离心时一定要配平。

实验九、β-受体阻断剂对离体脂肪组织游离脂肪酸释放的影响

【实验目的】

1.学习测定组织游离脂肪酸的方法。

2.观察β-受体阻断剂对脂肪代谢的影响。

【实验原理】

脂肪组织存在β-受体，凡能兴奋β-受体的药物均能引起游离脂肪酸的释放增加，若预先加入β-受体阻断药物，则可使游离脂肪酸释放量明显减少，甚至完全阻断，故可用来鉴定作用于β-受体的药物。

【实验对象】不饥俄的雄性大白鼠。

【实验药品】β-受体阻断剂（心得安）和学生在药物化学实验课中新合成的β-受体阻断药、戊巴比妥钠、培养液：4%的蛋白，5 mMol葡萄糖（克-任氏液）、NE、Adr、ISO、心得安、5% CO₂氧气、游离脂肪酸测定试剂盒。

【实验器材】组织匀浆机、手术剪刀、手术镊子、双波长紫外分光光度计。

【实验方法】

取不饥俄雄性大鼠，腹腔注射戊巴比妥钠30 mg/kg麻醉，手术打开腹腔，取出附睾脂肪垫，放入室温的生理盐水中备用。

称取脂肪组织每份200 mg，共3份，分别用剪刀剪成细小碎块，分装于三个长颈瓶内，按下列条件分组：

1.对照组：加入培养液4 ml。

2.试验组Ⅰ：加入NE、Adr或异丙肾上腺素0.1 ml(20～30 ng/ml)，亦可换加受试药液0.1 ml，然后再加入培养液3.9 ml。

3.试验组Ⅱ：先加入0.1 ml心得安（不同浓度）和培养液3.8 ml,37℃培养15分钟后，再加入NE、Adr、ISO、0.1 ml(20～30 ng/ml)，亦可换加受试药液0.1 ml。

上述三瓶充以含有5% CO₂的氧气10 min，37℃振荡培养90 min，然后从各培养液中分别取出定量的培养液，按试剂盒说明测定游离脂肪酸含量（FFA），以Μm FFA/200 mg/90 min表示，最后算出应用β-受体阻断药后对β-受体兴奋药引起FFA释放增加量的抑制百分率。

实验十、传出神经系统药物对离体家兔肠管平滑肌的影响

【目的和原理】家兔小肠平滑肌上存在a、b、Ｍ受体。a、b受体兴奋可使小肠平滑肌抑制而舒张；Ｍ受体兴奋可使小肠平滑肌兴奋而收缩。观察乙酰胆碱、阿托品、肾上腺素等传出神经系统药物对离体家兔小肠平滑肌的作用并掌握离体平滑肌的实验方法。

【实验对象】离体小肠（家兔由来）

【实验药品】① 5×10^-4氯化乙酰胆碱 （ACh）

            ② 0.5% 硫酸阿托品 （Atropine）

            ③ 0.1% 盐酸肾上腺素 （Adr）

            ④ 20% 氯化钡

【实验器材】 RM6240多媒体生物信号记录分析系统、PC80586计算机、张力传感器、麦氏浴槽、超级恒温水浴、氧气瓶、通气钩、高位吊瓶、量筒、烧杯、滴管、培养皿、注射器、外科剪刀、眼科镊子、缝衣针、棉线

【实验方法】

一.调试RM6240系统，使进入肌张力测定状态

1.打开计算机并打开RM6240多媒体化生物信号记录分析系统开关。确定张力换能器与通道1连接。

2.进入RM6240菜单。选择通道1，在界面右侧控制参数区选择<张力>, 选择<3g>, 扫描速度1.0 s/div，确定信号输入。在工具菜单选择快速归零。

3.在主菜单中选择 <示波>, 进入示波状态。

4.在主菜单中工具栏选择 <网格切换> 将背景网格切换为细格, 并在选项中选择波形颜色为红色。此时肌张力测试调试完毕。

二.调节仪器

将超级恒温水浴温度调节至38.5±0.5℃，向麦氏浴槽中加30 ml台式液， 通入氧气（1～2个气泡/秒）。

三.制备肠管标本

取家兔一只，以左手提其髂骨上部，右手执木棒击其后头部至昏后，迅速剪开腹腔，剪取整段空、回肠置于冷的台式液中，除去肠系膜，将肠内容物冲洗干净，剪成2 cm小段肠管备用。

四.装入麦氏浴槽及给药

将肠管标本两端用缝针各穿一线。一端打一空结（约1 cm小套），另一端穿上长线打结，用眼科镊钳住空结固定于通气钩上，放入麦氏浴槽中，将另端长线的近端打一空结，挂在张力换能器的小钩上，调节换能器高度，使前负荷为1 g，稳定标本20 min。在主菜单下选择<纪录状态>，先描记一段正常曲线，然后按下列顺序给药。

1.向麦氏浴槽中加入5×10^-4M ACh 0.2 ml 同时用标记框在屏幕上作给药标记，观察肠段反应。当反应最明显时，用暂停键，将计算机转入“示波状态”。用台氏液冲洗肠管3遍，稳定标本15 min，加入下列药物。

2.将系统重新转入“纪录状态”，描记一段正常曲线后，向麦氏浴槽中加入0.5% Atropine 0.2 ml并作标记，观察曲线变化，1 min后加5×10^-4M ACh 0.2 ml 并标记,观察肠段反应。将肠段反应。然后将计算机转入“示波”状态后，用台氏液冲洗肠管3遍，至标本稳定。

3.将系统重新转入“纪录状态”，描记一段正常曲线后，向麦氏浴槽中加入0.01% Adr 0.1 ml并作标记，观察曲线变化。将计算机转入“示波”状态后，用台氏液冲洗肠管3遍，至标本稳定。

4.将系统重新转入“纪录状态”，描记一段正常曲线后，向麦氏浴槽中加入20% 氯化钡 0.2 ml并作标记，观察曲线变化。在主菜单下选择“结束实验”，储存实验结果，激活工具栏，系统进入分析状态。

【实验结果】

在主菜单下选择“数据编辑”命令，然后通过剪切，选择剪切区域,将4次记录结果编辑在一个屏幕中。

在主菜单下打印项进行打印模式设置，记入测量、学生及实验信息后，预览、打印。

以描图及文字记述分析正常离体肠管的张力和舒缩情况，加入药物后的反应，并对结果进行适当的讨论。

【注意事项】

1.操作时应避免牵拉肠管，造成肠管活性不好。

2.穿肠段时，应十字交叉穿线，并用单线。

3.保护张力换能器，切不可牵拉过度

4.给药时将药液直接加入麦氏浴槽内，既不要碰线也不要碰壁。

实验十一、异丙肾上腺素致心肌缺血心电图变化及病理组织学变化

【目的和原理】　掌握制作急性心肌缺血模型的实验方法和动物心电图的测定方法。异丙肾上腺素是一个强的β-受体兴奋剂，能通过加快心率、增强心肌收缩力等环节增加心肌耗氧量，造成心脏负荷过重，心肌微循环障碍，连续应用可形成心肌梗塞样变化，用心电图和病理切片可检测病变程度。

【实验对象】　大鼠，雄性，体重250～300g。

【实验药品】β-受体阻断药、盐酸异丙肾上腺素、10%甲醛溶液、生理盐水。

【实验器材】　心电图机、注射器（1.0、5.0 ml）、量角器、圆规、组织固定瓶、铅笔。

【实验方法】取大鼠16只，分为两组，一组为试验组，另一组为生理盐水组。

先做心电图检查，去除T波和ST段有异常改变者和心律失常者，试验组给受试药物（新合成的β-受体阻断剂），生理盐水组给等容积生理盐水，两组动物均皮下注射盐酸异丙肾上腺素6 mg/kg，连续注射2天，第1次和第2次给异丙肾上腺素后30 min内，每隔5 min记录心电图1次、记录Ⅱ、avF和v₃导联，第2次给药后24 h，记录心电图，随后，处死动物，取出心脏作病理切片检查。

附：异丙肾上腺素引起的心电图变化为：T波由正变负或双相，并伴有ST段抬高，窦性心动过速（心率明显加快），早搏或其它心律失常。病理组织变化有：心肌纤维肿胀、断裂、横纹肌消失，甚至溶解，发生玻璃样变和脂肪变性。

[实验结果]　记入下列两表中

表1　β-受体阻断剂对异丙肾上腺素所致心肌缺血大鼠心电图（T波）的影响

表2　β-受体阻断剂对异丙肾上腺素所致心肌缺血大鼠心电图（ST段）的影响

实验十二、肝损伤大鼠肝脏细胞色素P-450的测定

【目的和原理】　掌握扑热息痛致大鼠肝损伤的实验方法。掌握肝组织细胞色素P450的测定方法。扑热息痛在大剂量下，其毒性代谢物N-乙酰-对苯醌亚胺（NAPQI）超过了体内GSH的解毒能力，于是未被清除的NAPQI与生物大分子结合影响细胞的功能。还原状态下的细胞色素P450与一氧化碳结合，形成复合物，在波长450 nm处出现最大吸收峰。可根据峰高值计算P450酶的含量。

【实验对象】　大鼠，雄性，体重250～300 g。

【实验药品】　扑热息痛、生理盐水、连二亚硫酸钠（还原剂注意避光保存）、一氧化碳、匀浆缓冲液：50 mmol/L Tris，1.15% KCl (pH7.4)、蔗糖液0.25 mol/L。

【实验器材】　滤纸、组织匀浆机、超速低温离心机、移液器、注射器、手术器械、天平、双光束紫外分光光度计。

【实验步骤】

1.取大鼠6只，称重、编号、随机分为2组：空白对照组与扑热息痛组，每组3只。扑热息痛组腹腔注射扑热息痛100 mg/kg，空白对照组腹腔注射同体积生理盐水。

2.禁食16小时，处死动物，迅速取出肝组织

3.微粒体制备

①将新鲜肝脏放入冷冻的生理盐水中清洗，用滤纸擦干并称重。

②按1:4加入匀浆缓冲液，制备肝匀浆。

③在10000×g低温离心20 min。

④弃去沉淀，将上清液转移至超速离心管内，在105,000×g离心60 min。

⑤离心后上清为胞浆部分，沉淀为微粒体。将微粒体沉淀重悬于蔗糖液（用手动匀浆器为佳，蔗糖液的加入量以ml/g肝为宜）。

4.微粒体悬液可新鲜使用，也可存放-80℃备用。

5.细胞色素P450测定的操作步骤

①将待测样品配制成0.5 mg/ml的蛋白液，置于冰浴中。

②取数毫克连二亚硫酸钠，加入到待测样品中混匀。

③将样品等量加入到比色杯中，分别加入到分光光度计的对照池和样品池中，从500 nm到400 nm作基线扫描。

④将样品池中比色杯取出，充一氧化碳约30 s（以气泡连续，液体不能溢出为好），然后放回原位，从500 nm到400 nm扫描，并记录峰形及峰高。

【实验结果】　按下列公式计算细胞色素P450的含量：

P-450nmol/mg=

ΔOD =从波长490 nm到450 nm的OD值之差。

记入下列表格中

【注意事项】

1.制备微粒体时，组织匀浆不要泡沫太多，否则会引起酶蛋白的变性。

2.测定时还原剂不要加入太多，以免会破坏血红蛋白。

3.如果样品在420 nm处出现明显的吸收峰，说明P450有部位失活，可考虑重新制备新鲜样品。

4.测定诱导过的微粒体样品时，需要事先稀释样品，P450含量测定范围以0.4～1.0 nmol/mg为佳。

实验十三、利尿药对麻醉家兔尿量及尿中钠、氯离子含量的影响

【目的和原理】

学习急性利尿的实验方法，观察呋塞米对麻醉兔的利尿作用；学习测定尿液中钠离子和氯离子的方法。

尿液中的钠离子与醋酸铀镁试剂作用,被沉淀为醋酸铀镁,然后以亚铁氰化钾和试剂中剩余的醋酸铀作用,使成形棕红色的亚铁氰化铀。尿液中钠的含量越多,剩余的醋酸铀越少,显色越淡。反之,钠的含量越少,剩余的醋酸铀越多, 则显色越深。故从剩余的醋酸铀量,可间接计算出钠的含量反应式如下：

         ＮaCl+3(UO₂)(CH₃COO)₂+Mg(CHCOO)₂+CHCOOH

—→(UO₂)₃MgNa(CH₃COO)₉+HCl

2(UO₂)(CH₃COO)₂+K₄〔Fe(CN)₆〕

—→(UO₂)2〔Fe(CN)₆〕+4CH₃COOK  棕 红 色

用硝酸银试剂将尿液中的氯离子沉淀为氯化银。如硝酸银略有过量，便与铬酸银作用，成形桔红色的铬酸银。其反应式如下：

          NaCl + AgN0₃ → AgCl↓+NaN0₃

   2AgN0₃+K₂Cr0₄→ AgCrO₄ ↓ +2KN0₃

【实验对象】家兔,1.5～2.5 kg

一．家兔尿量的测定

【实验药品】25% 乌拉坦、1% 呋塞米

【实验器材】兔手术台、量筒、注射器、手术器械

【实验方法】

1.水负荷：灌胃给与自来水40 ml/kg，避免灌至气管。

2.麻醉：耳缘缓慢i.v.25% 乌拉坦4 ml/kg，随时观察角膜反射，反射消失即停止注射。

3.手术：背位固定家兔，剪去下腹部被毛，于耻骨联合上方切开皮肤约4～5 cm，并沿腹白线剪开肌肉，暴露膀胱，在少血管区作荷包缝合后行膀胱插管，在插管前要将插管里充满生理盐水。

4.记录每2 min的正常尿量，连续记录10 min。

5.耳缘静脉注射1% 呋塞米4 mg/0.4 ml/kg，记录给药后2、4、6、8、10、12、14、16、18、20 min的尿量（每2 min的尿量）

【实验结果】结果汇总，计算不同时间尿量的均值，以尿量毫升数为纵坐标，给药后时间为横坐标作图。

二．尿液中钠离子和氯离子的含量测定

测定体液中的钠离子以火焰光度法为最简便可靠,在没有火焰光度计的场合,也可用醋酸铀镁比色法来进行。测定体液中的氮离子则多用银滴定法。

( 一 ) 尿中钠离子的醋酸铀镁比色测定法

【实验试剂】

1.醋酸铀镁试剂：取醋酸铀（U₂(CH₃COO)₂·2H₂O）4 g、醋酸镁（Ｍg(CH₃COO)₂·4H₂O）15 g、冰醋酸15ml、加蒸镏水75 ml，加热溶解，并煮沸2 分钟。放冷后加蒸镏水至100 ml, 再加无水乙醇至500ml，于冰箱中过夜。除去底层的微量沉淀，将上清液贮存于棕色试剂瓶中，置冰箱中备用。

2.1% 醋酸溶液（V/V）。

3.10% 亚铁氰化钾溶液。

4.钠标准溶液：

①当量钠溶液：取氮化钠（Ａ．Ｒ．）少许置于烧杯中,放置110～120 ℃烘箱内4小时,取出后置于干燥器内待冷，精密称取5.845 g置于100 ml容量瓶内，加蒸镏水至刻度。

②150 mEq/L钠标准液: 准确吸取当量钠溶液15.0 ml, 置于100 ml 容量瓶内, 加蒸镏水至刻度。

③250 mEq/L 钠标准液: 准确吸取当量钠溶液25.0 ml, 置于100 ml 容量瓶内,

 加蒸镏水至刻度。

④200 mEq/L 钠标准液: 准确吸取当量钠溶液20.0 ml, 置于 100m1 容量瓶中

，加蒸镏水至刻度。

【实验器材】 光电比色计、冰箱、离心机、烧杯、试管、吸管。             

【实验方法】

1. 收集各实验组相应时间内的尿液，分别合并混匀，测量总量。分

别吸取各组尿液5ml, 加入氢氧化钙 0.2g, 摇匀,放置15分钟, 过滤, 以除去磷酸盐类。

2. 滤过之尿液与等量 200 mEq/L 钠标准液混合吸取 0.1 ml, 按表 5.1 操作。

表1  尿钠测定快速比色法操作步骤

以玻棒充分搅拌，使生沉淀，试管加塞，置冰箱中10分钟，离心沉淀。

   混匀后,10 min 内用520 nm 或绿色滤光片光电比色, 以 250 mEq/L 钠标准管作空白管，校正光密度到0点，读取标准管（150 mq/L 钠溶液）及测定管的读数。

计算

Na⁺ mEq/L × 2.3=Na⁺ mg/100 ml

【注意事项】

1. 醋酸铀镁的加入量必须准确，否则将影响实验结果。

2. 操作时试管放入冰箱及离心沉淀时，均需加塞，以免试剂中乙醇浓度变化而影响结果。

3. 醋酸铀镁试剂中所含醇的浓度必须为80%(V/V)，否则影响钠的沉淀。

4.尿中钾的浓度较高，与醋酸铀镁试剂作用后能与钠共同发生沉淀。但如将尿钠浓度提高至 150 mEq/L 以上时，则钠的干扰就不明显，因此宜在尿液中事先加入适当浓度钠标准液，然后测定之。测定尿液与200 mEq/L 钠标准液作等量混合，标准液与尿液均同时被稀释2倍，故须将测定结果扣除l00 mEq/L 后再乘以2。

5. 本法测定尿钠之浓度范周为O～250 mEq/L。如尿钠过高，加入钠标准液后测定结果超过250 mEq/Ｌ时，则应不加钠标准液重行测定，或将尿液稀释后测定。

   （二）尿中氯离子的银滴定法

【实验试剂】  1. 硝酸银标准液(每1 ml相当于氯化纳1 mg或氯离子0.606 mg):准确称取纯硝酸银2.063 g，置于1000 m1容量瓶内，加蒸镏水少许使其溶解，再以蒸镏水稀释至刻度。2. 20% 铬酸钾溶液：称取铬酸钾(K₂CrO₄)20 g,用蒸镏水溶解并稀释至100 ml.

【实验器材】  滴定管、吸管、自瓷蒸发皿

【实验方法】  用吸管准确吸取尿液1.0 ml, 置于蒸发皿中，加蒸镏水10 ml 和20%铬酸钾溶液2滴，慢慢滴入硝酸银标准液，随滴随摇，至呈不褪色的桔红色为止。记录所消耗硝酸银标准液的ml数。

【计算】　滴定时所消耗的硝酸银标准液 ml× 0.606 × 100=Cl^- mg/100 ml。

实验十四、家兔有机磷中毒与解救

【目的与原理】

掌握家兔有机磷酸酯类的中毒症状及阿托品和解磷定的解救作用;掌握胆碱酯酶活力的测定方法;了解胆碱酯酶活力测定时的基本反应过程。

有机磷酸酯类通过抑制胆碱酯酶活性，使乙酰胆碱在体内堆积，产生中毒症状。抗胆碱药阿托品能解除有机磷酸酯类中毒的M样症状，而解磷定可复活胆碱酯酶，恢复其水解乙酰胆碱的能力，以对骨骼肌震颤的效果产生最快，两药合用可提高解毒效果。

【实验对象】家兔，2.5～3.0 kg

【实验药品】   0.1%硫酸阿托品（atropine sulfate）、5%敌百虫(dipterex)、1%肝素(heparin)、2.5%解磷定（pyraloxime methoiodode, PAM）。

【实验器材】注射器（5 ml、10 ml、20 ml）、测瞳孔尺、刀片、采血杯、动脉夹、棉球。恒温水浴、分光光度计、试管架、试管、吸管（0.2 ml、1 ml、2 ml、5 ml）、加样器、滤纸、漏斗。

一、中毒症状的观察

【实验方法】

1.取家兔2只，称重，观察并记录活动情况、呼吸（频率，有无呼吸困难，呼吸道有无分泌等）、瞳孔大小、唾液分泌、大小便、肌张力及有无震颤等。

2.为采血方便，向家兔耳缘静脉注射1% 肝素0.5 ml/kg。

3.用酒精棉球擦拭兔耳外缘静脉或沿静脉走行拔毛，使其充血明显，用刀横向切开中段耳缘静脉，使血液(0.5～1 ml)自然流入采血杯中，并轻轻振荡采血杯，防止凝血。依上述方法取甲乙两兔耳静脉血各一份，供测正常胆碱酯酶活性用。

4.分别给甲乙两兔耳缘静脉注射5%敌百虫1.5 ml/kg。按前述指标观察并记录中毒症状，待中毒症状明显时，依上法再次采血供测中毒后胆碱酯酶活性用，然后，甲兔立即静脉注射硫酸阿托品1 ml/kg，乙兔立即静脉注射解磷定4 ml/kg，观察并记录甲乙两兔的中毒症状有何变化，在症状改善明显时采血，供测解救后胆碱酯酶活性用。

【实验结果】

根据本实验的观察项目，列表记录甲乙两只家兔中毒前后和用不同药物解救后的症状及血液胆碱酯酶活性的改变。

二、胆碱酯酶活性的测定方法(Hestrin法)

【实验原理】

乙酰胆碱在血液中被胆碱酯酶水解，产生醋酸和胆碱。在一定条件下，水解乙酰胆碱的量与胆碱酯酶的活性成正比，故在反应体系中，加入过量的乙酰胆碱使之参加反应，通过测定剩余的乙酰胆碱量即可计算出被水解的量，从而推出胆碱酯酶的活性。

乙酰胆碱呈色反应：乙酰胆碱可与羟胺作用生成乙酰羟肟酸，后者在酸性条件下与三价铁离子形成褐色的羟肟酸铁络合物，其颜色的深浅可反映乙酰胆碱含量的多少，反应过程如下：

1.   盐酸羟胺与氢氧化钠作用释放出游离羟胺

NH₂·HCl+NaOH    NH₂OH+NaCl+H₂O

2.   剩余乙酰胆碱与游离羟胺作用，生成羟肟酸化合物。

(CH₃)₃≡N(CH₂)₂OCOCH₃+NHOH     CH₃CONHOH+(CH₂)₃≡N(CH₂)₂OH

3.   羟肟酸化合物在酸性环境中与三氯化铁生成褐色的复合物（羟肟酸铁络合物）。

pH:1～1.5，FeCl₃+CH₃CONHOH      CH₃CONHO+HCl

【实验试剂】

7×10^-3mol/L氯化乙酰胆碱（acetylcholine chloride, Ach）：取适量Ach，用蒸馏水配成2.54% 溶液，冰箱保存，用以前蒸馏水20倍稀释成7×10^-3mol/L溶液。

1 mol/L盐酸羟胺（NH₂·HCl）：取25 g盐酸羟胺，加蒸馏水359 ml配成1 mol/L溶液备用，冰箱保存。

3.5 N NaOH.

4 N HCl.

3.7×10^-1 mol/L FeCl₃·6H₂O：取10 g FeCl₃·6H₂O，加蒸馏水20 ml左右，浓HCl 0.34 ml，加温溶解，最后加蒸馏水到100 ml制成3.7×10^-2 mol/L FeCl₃ 0.1 N HCl溶液。

pH7.2的磷酸盐缓冲液：取Na₂HPO₄·12 H₂O 16.72 g和K₂PO₄2.72 g，加蒸馏水到100 ml，冰箱保存。

【方法与步骤】

1.取中试管加磷酸缓冲液0.85 ml，血样0.15 ml，置于37±1℃的水浴中预热3～5分钟。

2.加入7×10^-3mol/L Ach溶液1.0 ml，于37±1℃的水浴中反应40分钟（若反应不充分，可继续反应20分钟），每隔10分钟振摇一次。

3.反应40分钟后立即加入碱性羟胺（1 mol/L NH₂·HCl与3.5 N NaOH溶液在用前20分钟等容混合，并不时振荡）4.0 ml。

4.依次加入4 N HCl和3.7×10^-2mol/L FeCl₃各2 ml，每加一种试剂都要充分振摇。

5.上述反应液用滤纸过滤，将滤液倒入1.0 ml的比色杯中，以530 nm的波长比色。

6.对照管设置:对照管1：为无血、无Ach的其他试剂空白对照；对照管2：为全血及试剂的空白对照，无Ach；对照管3（标准Ach值）：为反应系中全量Ach的对照：对照管的操作步骤与样品管相同。

表1 胆碱酯酶活性的测定步骤

【计算】

碱酯酶活性值以0.15 ml全血在40 分钟内水解Ach的μmol来表示（μmol Ach/0.15 ml/40分钟）

1.酶活性值的计算

A₁,A₂,A₃和A_样本 分别为对照管1、2、3和样品管的光密度值。A₃-A₁为单纯Ach全量的光密度值，A₂-A₁为血液的光密度值，A₃+(A₂-A₁) 为Ach、血液和试剂的光密度，A₃+(A₂-A₁)-A_样本的Ach的光密度值。

2.酶活性值的百分数计算

酶活性值的百分数

【注意事项】

1.有机磷农药静注时中毒症状发生快，抢救必须及时，如经15 min尚未出现中毒症状，可追加1/3量。敌百虫亦可改用腹腔注射给药。这样对于初学者来说还可以保存完好的耳缘静脉以备抢救之用。

2.敌百虫可经口、皮肤或呼吸道进入体内，手接触后应立即用自来水冲洗，且勿用肥皂，因为敌百虫在碱性环境可转变为毒性更强的敌敌畏。实验室应保持良好的通风，实验后应妥善处理接触过敌百虫的器具。

3.本实验系为分析阿托品和解磷定的解毒机制而设计。在临床实际应用中，须将阿托品和解磷定配合应用，才能获得最好的解毒效果。

4.解磷定剂量过大时，其本身也能抑制胆碱脂酶的活性，从而加重毒性反应。

实验十五、实验设计Ⅰ（中枢神经系统药物辨别）

【目的和原理】  通过药物鉴别实验，掌握中枢神经系统药物作用的特点，并学会分析作用机制。

【实验对象】  健康小鼠，体重18～22 g，雌雄均可。

【实验药品】  苦味酸、A药、B药、C药。

【实验器材】  1 ml注射器3支、玻璃缸3个。

【实验方法】 

⑴ 取9只小鼠分别标记称重、编号，均分成3组。观察一般活动（翻正反射是否存在，静卧还是活动不止），记录观察之所见。

⑵ 给药：

第1组小鼠腹腔注射A药，剂量为0.1 ml/10 g

    第2组小鼠腹腔注射B药，剂量为0.1 ml/10 g

  第3组小鼠腹腔注射C药，剂量为0.1 ml/10 g

⑶ 给药后连续观察40 min，并记录下列指标：①一般活动；②翻正反射是否消失以及消失时间、恢复时间；③惊厥先兆（竖尾、跳跃、尖叫、咬齿等）出现时间以及消失时间；④静卧出现的时间及消失时间。

【实验结果】

根据实验所见记录实验结果，然后确定A、B、C各为何药并说明理由。

⑴ 给药前

⑵ 给药后

【提示】  已知A、B、C三种未知药是生理盐水、氯丙嗪、戊巴比妥钠和尼克刹米中的三种，但不知A、B、C是何药。

实验十六、实验设计Ⅲ（传出神经系统药物辨别）

【目的和原理】　利用离体家兔小肠标本及已知药物，观察未知药物的作用并判断该未知药物属于哪一类别。

家兔小肠平滑肌上存在α、β、M受体，肾上腺素等能够兴奋α、β受体的药物可使小肠平滑肌抑制，蠕动减弱。而乙酰胆碱等可兴奋M受体的药物能使小肠平滑肌收缩，蠕动增强，此作用可被阿托品等M受体阻断剂所阻断。故可根据加药后小肠平滑肌的反应，判断所加药物的类别。

【实验对象】　家兔，雌雄兼用，体重2～3 Kg。

【实验药品】　5×10^-4 M氯化乙酰胆碱、0.03%硫酸阿托品、0.01%盐酸肾上腺素、20%氯化钡、Tyrode营养液（附录一）。

【实验器材】　S501-A型数显恒温水浴器、RM6240BD型多道生理信息采集处理系统、麦氏浴槽、肌肉张力换能器、微调定位器、氧气瓶、L型氧气钩、高位吊瓶、手术器械、精密PH试纸（6.4～8.0）、铁支架、铁三足架、铁圈、双凹夹、弹簧夹、注射器（0.25、0.5、1.0、2.5、5.0 ml）、烧杯（500、1000 ml）、量筒、缝针、缝线。

【实验步骤】

参照第四章之实验三的方法，自行设计实验方案，要求用1～2段肠管在4小时内完成实验，并判断出各被试药分别属于哪一类别。

【实验结果】

根据实验加药顺序及实验结果，对未知药物进行分析，并进一步推断药物发挥作用的方式，指出各药分别属于哪一类别，说明理由。

【注意事项】

1.  操作时应避免牵拉肠管，造成肠管活性不好。

2.  肠管两端穿线采用十字交叉法，肠管不易扭曲，便于营养液的流通。

3.  每次给药前均应浸洗肠管2～3次。

4.  给药时将药液直接加入麦氏浴槽内的液面上，不要碰线，也不要碰到管壁。