蛋白质浓度的测定
一.实验原理
考马斯亮蓝能与蛋白质的疏水微区相结合,这种结合具有高敏感性。考马斯亮蓝G250的磷酸溶液呈棕红色,最大吸收峰在465nm。当他与蛋白质结合形成复合物时呈蓝色,其最大吸收峰改变为595nm。考马斯亮蓝G250—蛋白质复合物的高消光效应导致了蛋白质定量测定的高敏感性。
在一定范围内,考马斯亮蓝G250—蛋白质复合物呈色后,在595nm下,吸光度与蛋白质含量呈线性关系。故可用于蛋白质浓度的测定。
二.实验设备与试剂
设备:普通离心机,721型分光光度计
试剂:标准蛋白液(100ug/ml)
三.实验材料
新鲜绿豆芽
四.实验内容
1. 标准曲线的制备
取9支干净的试管,按表进行编号并加入试剂。
2. 样品蛋白的测定
(1) 样品蛋白液制备
准确称取2g新鲜绿豆芽胚轴的部分,研磨成匀浆,离心分离(4000r/min,10min)。取上清液用0.9%nacl定容到10ml。
(2) 含量测定
另取两只干净的试管,加入样品液0.1ml,0.9mlnacl和考马斯亮蓝染液4.0ml,混匀。室温静置3min,与波长595nm处比色,读取吸光度。
五.实验结果
1. 标准曲线
结果如表所示,并以吸光度为纵坐标,个标准液含量为横坐标做标准曲线。
2. 样品蛋白含量的测定
样品蛋白的比色结果如表,根据直线方程求出每支试管中蛋白质含量。
根据公式求出样品绿豆芽蛋白质含量
样品蛋白的体积
蛋白质含量(ug/g鲜重)= 测定时取样的体积
称取样品的重量
六.结果与讨论
结果: 绿豆芽蛋白质含量=1233.0ug/g
讨论:
1.试液为混合均与就取样
2.量取溶液时读数有误差
3.读取A值时有读数误差
4.比色杯中的误差
实验二 蛋白质含量的测定(Folin-酚法)
一、研究背景
蛋白质是与生命、与各种形式的生命活动联系在一起的物质。可以说没有蛋白质就没有生命。它是机体的重要物质基础,机体的每一个细胞和所有重要组成部分都有蛋白质参与。蛋白质的结构千差万别,具有多种多样的生物学功能:例如酶的催化作用、激素的生理调节作用、血红蛋白的运载作用、肌纤维蛋白的收缩作用、机体的免疫作用和胶元蛋白的支架作用等。蛋白质不仅是构成各类细胞原生质的主要物质,而且核蛋白及其相应的核糖核酸还是遗传的主要物质基础。因此,建立正确的测定蛋白质含量的方法很重要。本实验所采用的Folin-酚法就是其中一种。
二、实验原理
Folin-酚法是一种根据蛋白质侧链基团中的特殊残基进行含量测定的简便而灵敏的方法。其理论基础是蛋白质中所含酪氨酸和色氨酸的残基数与蛋白质成正比。
Folin-酚试剂由两部分组成:试剂甲相当于双缩脲试剂,在碱性条件下含一定量的二价铜离子,Cu 2+在OH-条件下可与蛋白质中的肽键形成络合物。试剂乙为磷钨酸和磷钼酸混合液,在碱性条件下极不稳定,易被酚类化合物还原,生成钼蓝和钨蓝混合物而呈蓝色反应,在650nm下有光吸收。由于蛋白质中存在含有酚基的氨基酸,所以上述络合物可与试剂乙反应,而其反应颜色的深浅与蛋白质的含量成正比,从而可以据此测定蛋白质的含量。
三、仪器与试剂
1、仪器
(1)722型分光光度计:上海精密科学仪器有限公司
(2)架盘天平:北京天平物华医疗器械有限公司
2、试剂
(1)试剂甲:相当于双缩脲试剂。
(2)试剂乙:磷钨酸和磷钼酸混合液。
(3)250微克/毫升的牛血清白蛋白标准原液
四、实验步骤
1、配制系列牛血清蛋白溶液
取具塞试管6支,按表一加入牛血清白蛋白标准原液及蒸馏水。编号1~6备用。
2、配制样品溶液
称取绿豆芽下胚轴1克于研钵中,适当滴加蒸馏水,匀浆。转入50毫升容量瓶中,定容。尔后过滤得到样品液。
取具塞试管两支,编号7,8。分别加入滤液1毫升。
3、标准液及样液的测定
同时在8支试管中加入试剂甲5毫升,混合后在室温下放置10分钟。后再同时加试剂乙0.5毫升,立即混合均匀。半小时后,以不含蛋白质的1号试管为对照,与其他7支试管内的溶液依次用分光光度计于650nm波长下比色。记录各试管内溶液的消光值。取样液的平均值进行计算。
4、绘制标准曲线与计算
以消光值为纵坐标,以牛血清白蛋白含量(微克/ml)为横坐标,绘制标准曲线。查出测定液中蛋白质的含量X(微克/ml),计算样品中的蛋白质的百分含量。
五、数据整理和计算
表一 标准溶液和样品的OD650值
样品中蛋白质含量(%)=X(ug/ml)*样品总体积(ml)*100
样品重(g)*106
将数据X(ug/ml)=93 ug/ml代入公式
样品中蛋白质含量(%)=93*50*100/(1*106)=0.465 %
六、结果分析
经过本实验的数据计算,得到绿豆芽中蛋白质含量为0.465%,与其他实验组的同学讨论得知,所测得的含量都与我组所测的数量级相同。分析可知,豆芽不同,生长所需要的条件和时间也不尽相同,所以数据会有一定偏差。此外,在用电脑作图时,添加趋势线的精确度不同,得到的样品的蛋白质含量也不同,也会造成轻微的影响。
七、思考题
1. 为什么要求加入试剂乙后立即混匀?否则将会如何影响测定结果?
已知试剂乙未磷钨酸和磷钼酸混合液,乙试剂在酸性条件下较稳定,在碱性条件下极不稳定。又知Folin-酚甲试剂是在碱性条件下与蛋白质作用生成碱性的铜-蛋白质溶液,所以加入试剂乙后要立即混匀,以便在在磷钼酸-磷钨酸试剂被破坏之前,使还原反应发生。否则试剂乙含量减少,使得蛋白质与试剂甲作用后的溶液不能完全反应,以致所测蛋白质含量偏低。
2. 试分析本实验方法中的干扰因素。
本实验方法中从物质角度分析蛋白质中氨基酸的R基团中的酚类物质,豆芽中的柠檬酸、甘氨酸、各种糖以及各种还原剂等对测定均有干扰作用。从实验过程分析,反应的操作时间不易控制,如:加入试剂乙后迅速混匀等。
3. 为什么测定同一类甚至同一种物质的含量会有多种测定方法?
每一种测量方法都有各自的特点,即各有各的优缺点。我们在选择测量方法时,要考虑实验对测定所要求的灵敏度和精确度,存在的干扰因素,测定所要花费的时间等等方面。所以会有多种测定方法。
4. 蛋白质的测定方法有哪些?各有什么特点?
凯氏定氮法、双缩脲法(Biuret法)、Folin-酚试剂法(Lowry法)、紫外吸收法、考马斯亮蓝法(Bradford法)。
(1) 凯氏定氮法:灵敏度低,误差为 ±2%, 费时。
(2) 双缩脲法(Biuret法): 灵敏度低,中速,用于快速测定,但不太灵敏;不同蛋白质显色相似。
(3)紫外吸收法: 较为灵敏,快速 。利用蛋白质中的酪氨酸和色氨酸残基在280nm处的光吸收。
(4)Folin-酚试剂法(Lowry法): 灵敏度高,慢速;操作要严格计时;颜色深浅随不同蛋白质变化。
(5)考马斯亮蓝法(Bradford法): 灵敏度最高,快速。考马斯亮蓝染料与蛋白质结合时,其lmax由465nm变为595nm。
八、参考文献
1.《蛋白质测定方法评价》:路苹,于同泉,王淑英,王建立,杨柳;《北京农学院学报》,第21卷,第2期,20##年4月
2. 《不同萌发期绿豆芽蛋白质含量的测定及营养价值分析》:李瑞国,朱秀敏,杨慧 ;《山东农业科学》,20##年01期
九、实验小结
在预习本实验时,我觉得应该能很快完成实验,但实际上我们成了最后一组。问题在于操作还不是很熟练,遇到突发情况反应太慢。在测消光值时还把比色杯磨砂面对准了透光孔,导致实验数据出现较大波动而重新测量。这些问题都不应该出现,在以后的实验中会尽量避免。此次的实验不仅仅在锻炼我的操作能力,也让我对蛋白质的测量方法有了深刻的了解,查阅了多种测量方法,加深了对蛋白质的学习。
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