益母草注射液对大鼠离体子宫平滑肌的作用
一、【目的】
1、掌握大鼠离体子宫实验方法。
2、观察益母草注射液对大鼠离体子宫活动的作用。
二、【原理】
益母草为活血化瘀药,主要成分是益母草碱,实验研究表明益母草及益母草碱可以使子宫平滑肌收缩,对子宫呈兴奋作用:并且益母草碱的作用和剂量有关
三、【材料】
动物:成熟雌性大鼠,未孕。
器材:麦氏浴槽、恒温水浴、L型通气管、生理记录仪、肌力换能 器、 注射器、烧杯、手术剪、眼科剪、眼科镊、培养皿、丝线、娃心夹。
药物:益母草注射剂。
试剂:己烯雌酚注射液(1mg/ml)、 3%戊巴比妥钠溶液、戴雅隆氏液。
四. 【实验方法及步骤】
1.实验24小时前注射己烯雌酚注射液剂量0.2mg/100g(提高子宫对药物的敏感性)。
2.安装实验装置,调节仪器:浴槽内加入戴雅隆氏液,水温恒定38±0.5℃,空气通入量60—100个气泡/min.
3.大鼠处死,迅速剪开腹腔,剥去子宫周围组织,从子宫两角相连处
剪断,取出放置于有戴雅隆氏液的培养皿,清除多余组织。从子宫两角相连处剪开,取一侧子宫角(3cm),两端用线及结扎,固定于L型通气管小勾上,另一端与肌力换能器相连,给予1g负荷待收缩平稳后记录一段正常收缩曲线(10分钟)。
4.按下表加入不同浓度的益母草注射剂(直接加到浴槽中)反应明显后,更换已预温到38±0.5℃的新鲜营养液(冲洗3次),静置适当时间,待子宫收缩恢复正常时记录一段曲线即可再行实验。
五. 【实验数据记录】
频率(次/10min) 幅度(mm) 活动力(次×mm) 药物浓度
(ug/ml) 药前 药后 药前 药后 药前 药后
0.2
0.4
0.8
1.6
3.2
六. 【注意事项】
1.戴雅隆氏液宜在实验当日配置。
2.取子宫的时候要动作迅速轻柔,切忌过度牵拉。
3.益母草碱的剂量(浓度)因受实验器材、实验条件等因素影响而略有差异,可经预试后确定。
七. 【思考题】
1.益母草兴奋子宫的成分和机理?
2.根据实验结果分析剂量和效应是否相关;绘制量效关系图。
3.益母草提取液不同剂量对子宫的作用有什么不同?量效关系如何?
综合性实验预习报告
实验目的:通过对植株的特殊处理,从实验现象深入的了解盐分对植物生长发育的影响,掌握植物的盐适应及抗盐机理。从而改变植株生活环境,提高作物产量。
实验材料:玉米种子 氯化钠溶液
实验处理:种子用10%的NaClo4 消毒10min,用自来水充分冲洗,再用蒸馏水冲洗。用蒸馏水浸泡吸涨,放入培养箱中适宜温度下萌发,挑选芽长势一致的种子播于培养器中,放在阳光充足的地方进行培养。挑选长势一致的三叶期玉米幼苗进行以下处理。对照(CK):1/4 Hoagland 溶液。 盐胁迫处理(k0):含150 mmol/L NaCl 的1/4 Hoagland( 霍格兰培养液) 溶液。施钾后盐胁迫处理处理(k1):150 mmoL/L NaCl+1/4 Hoagland +6mmoL/L KCl(营养液中总K+浓度为9 mmoL/L),三次重复。测定指标:
1. 用Handy PEA叶绿素荧光仪测定初始荧光(Fo),PSII最大光能转换效率(Fv/Fm),非光化学淬灭(NPQ)。测定前暗适应20min,同一处理重复四次(三个平行),取平均值。
2. 便携式光合测定仪进行叶片活体测定,测定叶片净光合速率(Pn)、气孔导度(Gs)、细胞间隙C02浓度(Ci)。同一处理重复3次,每片叶片读取三次数值并计算平均值。
3. 对不同时间断植物的根系活力进行测定,同一处理重复三次,每个材料读取三次数值,并计算平均值。
实验内容:
一、叶绿素含量测定
操作步骤
取新鲜植物叶片(或其它绿色组织)或干材料,擦净组织表面污物,去除中脉剪碎。称取剪碎的新鲜样品2g,放入研钵中,加少量石英砂和碳酸钙粉及3mL95%乙醇,研成均浆,再加乙醇10mL,继续研磨至组织变白。静置3~5min。
取滤纸1张置于漏斗中,用乙醇湿润,沿玻棒把提取液倒入漏斗,滤液流至100mL 棕色容量瓶中;用少量乙醇冲洗研钵、研棒及残渣数次,最后连同残渣一起倒入漏斗中。
用滴管吸取乙醇,将滤纸上的叶绿体色素全部洗入容量瓶中。直至滤纸和残渣中无绿色为止。最后用乙醇定容至100mL,摇匀。
取叶绿体色素提取液在波长665nm、645nm 和652nm 下测定吸光度,以95%乙醇为空白对照。
计算
按照实验原理中提供的经验公式,分别计算植物材料中叶绿素a、b 和总叶绿素的含量
叶绿素a= (12.7 A665 -2.69 A645)×
叶绿素b=(12.7 A645 - 2.69A665)×
总叶绿素a=(20.0A645 + 8.02 A665 )×
或总叶绿素a=
二、植物光合速率测定
LI-6400光合作用测定仪操作过程相当复杂,这里仅简单介绍其测量的过程,由于该仪器比较昂贵,同学们一定要在教师的指导下进行操作。
仪器连接
1)将连接电缆与操作控制台连接
将25针的连接器一端插入标有[IRGA]的插座中,另一端插入标有“CHAMBER”插座中,并且拧紧连接器上的螺丝钉(注意不要拧得太紧,否则螺丝钉将被折断)。将末端有黑色标记的软管与操作台右端标有[SAMPLE]的端口(管口有黑色皮垫)连接,另外一个软管(无黑色标记)与标有[REF]的端口(管口无黑色皮垫)连接。标有[INLET]的端口(套有红色软管)是空气的入口。在空气进口处连接一个缓冲瓶,悬挂在空中2~3 m处,以防止污物进入主机,同时在测量过程中可减少空气流动对测量结果的影响。
2)连接电缆与IRGA头部
圆形IRGA端口上的红色圆点和IRGA分析器上的红色选点对齐时才能顺利插进,并且能听到响声。
OPEN程序加载
(1)开机【open】。
(1) OPEN程序安装。必须选择Enter键OPEN程序才会被安装。
(2) 选择配置文件。配置文件一定要选择与IRGA分析器头部安装的叶室类型一
致。厂家默认配置(factory default)是2 cm×3 cm标准叶室,即利用太阳光源、不能对叶室中的光照强度进行控制。
(4)Power up the IRGAs,此处应该选择“Y”。
仪器校正
1)流量校正
选择[Flow Meter Zero],10s后流量信号应该在±1 mv以内。然后选择[OK]或【F5】。如果仪器不能自调,则用手动调节【F1】和【F2】,再选择【esc】返回校正主菜单。
2) CO2和H2O零点校正
(1)关闭叶室。叶室中不能有叶片,然后选择“Y”。
(2)CO2零点校正。将药品罐上的BYPASS旋钮螺旋到清洗CO2(Scrubber CO2)和水分干燥(H2O desiccant)方向;当 CO2读数波动小于 0.1,认为读数稳定;按下Auto CO2,仪器将自动调整CO2零点,调整结束后,CO2读数基本为零;按 QUIT(F5) 退出。
(3)H2O零点校正。保持药品罐不动;当 H2O波动小于 0.01 时,认为读数稳定;按下Auto H2O,仪器会自动调整H2O零点,调整(至少15 m)结束后,H2O 的读数基本为零;按 QUIT(F5) 退出。
3)CO2 Mixer校正
(1)在[Calibration Menu]中选择[CO2 Mixer Calibrate],并将CO2调节旋钮拧至Scrub,并关闭叶室,拧紧Cylinder Cover使钢瓶中CO2释放。
(2)[Ok to continue],选择[Y]。
(3)仪器自动检测CO2 Mixer的最大值,应该在2200 ppm左右,并达到稳定。
(4) CO2 Mixer为0~5000 mV进行8个点的自动校正,每个点大约需要20~30 s
(5)[Plot this (Y/N)],选择[Y]。
(6)显示校正数据的图形,近似为直线。
(7)应用校正结果[Implement this calibration(Y/N)],选择[Y]。
(8)选择[esc]键返回到校正主菜单。
4.数据测量
(1)打开一个保存测量数据的文件。
(2)输入保存测量数据的目的文件名。
(3)增加标记以便数据的分析。
(4)夹入叶片。
(5)匹配:如果ΔCO2 >0.5 (正常值可以< 0.3),则需要按【F5】 “Match”(匹配 )。
(6)手动或自动保存测量数据,保存功能键按【F1】;
(7)关闭(close)文件,保存数据文件按【F3】,然后建立新文件,开始新的测量。
5.数据导出
安装数据下载软件(LI-6400的Excel下载软件及气体交换方程的Excel计算软件),或者导出文本文件后,在SPSS中打开,进行统计分析和作图,分析实验结果。
三、叶绿素荧光参数测定
1、打开电源开关,FMS便默认“Local mode”,在运行菜单前会出现一个仪器版本的指示。
2、运行菜单:当首次打开仪器后,仪器会自动默认script number 1和最后使用的手稿程序,同时显示还剩余内存以及完成Script所用的时间。
3、按Run键运行手稿。
4、选择不同的Script:FMS主机中有六个贮存区,每个区可以容纳一个单独的实验。通过“Exp”功能键选择试验需要的手稿。
5、检查仪器参数状态:按“Stat”键,修改仪器存储荧光数据的存储方式、剩余的内存空间等。
6、测定:将叶片适应夹夹到叶片上暗适应10~30min后,把暗适配器按放到暗适应夹上,打开暗适应夹的拉杆,按“RUN”进行测定。
7、显示测定结果后按“SAVE”键,保存测定的荧光参数,进行下一个样品的测定。
8、向PC上装载数据:将主机与PC机连接,启动“Modfluor”软件,把曲线数据传输到计算机中。
9、将参数数据下载到计算机中:启动“Parview”软件程序传输荧光参数。
4.小结与讨论
植物耐盐性的大小由植物的遗传性决定 ,植物耐盐性状是一种典型的数量性状,是受多基因控制决定而表现出来的,其分子机制十分复杂,涉及多种基因和大分子的协同作用[11]。其中与耐盐性密切相关的是植物的发育阶段和植物种类及品种,盐分抑制种子萌发,其抑制程度随着盐浓度的增加而增大。植物耐盐性状是一种典型的数量性状,是受多基因控制决定而表现出来的,其分子机制十分复杂,涉及多种基因和大分子的协同作用,因此在不同盐分浓度下,树种耐盐性指标不是完全相同的。植物适应环境的结构机理是复杂的,不同环境导致植物体结构的不同,盐渍环境不但影响植物的生长,而且诱导其结构和形态发生变化变化了的盐生植物结构,特征就是对盐碱逆境的适应[12]
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